一、保存温度和条件
很多抗体的最佳保存条件是分装成小包装冻存于-20°C或-80°C。分装能使冻融引起的损失减到最小，同时可避免多次在一个管内取样而由枪头引入的污染。分装冻存的抗体，融解一次后剩余抗体应保存于4°C。收到抗体后，应10,000 x g 离心20秒，使管口螺纹内的抗体溶液全部离心至管底，用低蛋白吸附性的微量离心管分装。分装量的多少取决于每次试验的使用量。分装量不能少于10μl；分装量越少，由于蒸发和吸附于管内壁而引起的损失会越大。
除了腹水液含蛋白酶应立即冻存外，大多数抗体接收后可在4°C保存一至两周，随后可冻存以长期保存。同样，应按照说明书推荐的条件进行保存。
二、特殊情况
1、酶联抗体，不应冻存，4°C可保证稳定。冻融会降低酶的活性，同时影响抗体的吸附能力。
2、偶联标记的抗体，无论是标记的荧光染料、酶还是生物素，都应保存于深色的管内并包裹上铝箔。如果暴露在光线下可能会减弱偶联标记物的活性。荧光标记物尤其容易受到光漂白作用，整个实验过程中均应避光。
3、免疫球蛋白G3同种型抗体冻融后易形成聚合物，因此应一直保存于4°C。
4、用叠氮化钠防止污染
为防止微生物污染，在抗体溶液中应加入叠氮化钠，终浓度为0.02%（质量百分比）。
5、什么时候不能用叠氮化钠
如果用抗体标记活细胞，或用于体内实验，确保所用制剂中不含叠氮化钠。这种抗生素对大多数有机体都有毒性：会阻断细胞色素电子传递系统的信号。
叠氮化钠会干扰胺基的偶联标记，应在进行标记之前将其除去。标记后抗体可保存于叠氮化钠，也可用不含胺基的硫柳汞替代。叠氮化钠可用透析或凝胶过滤法从抗体溶液中除去。免疫球蛋白 G的分子量是150,000 kDa（免疫球蛋白M的分子量是600,000 kDa），叠氮化钠的分子量是65道尔顿。使用14,000 kDa的微量透析装置，随着叠氮化钠的扩散，抗体将保留。将带有烧杯的磁力搅拌器置于4°C搅拌透析装置6小时 , 每毫升抗体溶液要用至少1升的磷酸盐缓冲液。更换2次磷酸盐缓冲液，每次均搅拌至少6小时。如果可以的话，所有材料均要求无菌，所有溶液都应无菌配制。
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